Сукцинатдегидрогеназа: различия между версиями

Материал из Википедии — свободной энциклопедии
Перейти к навигации Перейти к поиску
Интерактивная навигация по истории
[отпатрулированная версия][отпатрулированная версия]
← Предыдущая правкаСледующая правка →
Содержимое удалено Содержимое добавлено
ВизуальныйВики-текст
Метки: с мобильного устройства из мобильной версии
Строка 38: Строка 38:
== Структурная организация комплекса II ==
== Структурная организация комплекса II ==
[[Файл:SuccDeh(ru).svg|thumb | left | 320px | Субъединицы сукцинатдегидрогеназы]]
[[Файл:SuccDeh(ru).svg|thumb | left | 320px | Субъединицы сукцинатдегидрогеназы]]
Мономер комплекса II в [[митохондрии|митохондриях]] [[млекопитающие|млекопитающих]], [[простейшие|простейших]], [[Грибы|грибов]] и многих [[Бактерии|бактерий]] состоит из четырёх [[Белковые субъединицы|субъединиц]], кодируемых ядерным геномом: двух [[Гидрофобность|гидрофильных]] и двух [[Гидрофобность|гидрофобных]]. Молекулярная масса полного мономера по разным данным составляет от ~125 [[кДа]]{{sfn|Ермаков|2005|с=239}} до ~140 кДа<ref name="High Molecular Weight">{{cite journal | author =Kovářová, N., Mráček, T., Nůsková, H., Holzerová, E., Vrbacký, M., Pecina, P., Hejzlarová, K., Kľučková, K., Rohlena, J., Neuzil, J., Houštěk, J| title =High Molecular Weight Forms of Mammalian Respiratory Chain Complex II | journal = PLoS ONE | volume =8 | issue = 8 | pages =e71869 | year = 2013 | month = August | pmid = | doi =10.1371/journal.pone.0071869}}</ref>. Две гидрофильные субъединицы обращены в матрикс. Субъединица А представляет собой [[флавопротеин]], а субъединица B несёт железосерный белок. На субъединице A расположен ковалентно связанный [[ФАД]], и сайт связывания [[сукцинат]]а, а на B находятся три железосерных кластера: [2Fe-2S], [4Fe-4S] и [3Fe-4S]. У человека субъединица А представлена двумя изоформами (субъединицы типа I и II), эти изоформы также обнаружены у ''[[Ascaris suum]]'' и ''[[Caenorhabditis elegans]]''<ref>{{cite journal | author = Tomitsuka E, Hirawake H, Goto Y, Taiwaki M, Harada S, Kita K | title = Direct evidence for two distinct forms of the flavoprotein subunit of human mitochondrial complex II (succinate-ubiquinone reductase) | journal = J. Biochem | volume = 134 | issue = 2 | pages = 191–5 | year = 2003 | month = | pmid = 12966066 | doi = 10.1093/jb/mvg144}}</ref>. Гидрофобные субъединицы C и D — трансмембранные белки. Вместе они образуют цитохром ''b''<sub>560</sub>, в шести [[Трансмембранный белок|трансмембранных]] α-спиралях которого расположен [[гем b|гем ''b'']] и сайт связывания [[убихинон]]а. Две молекулы [[фосфолипидов]], один [[кардиолипин]] и один [[фосфатидилэтаноламин]], которые заполняют гидрофобное пространство между субъединицами C и D ниже гема ''b''<ref name = Yankov03>{{cite journal |author=Yankovskaya V, Horsefield R, Törnroth S, etal | title = Architecture of succinate dehydrogenase and reactive oxygen species generation | journal = Science | volume = 299 | issue = 5607 | pages = 700–4 |date=January 2003 | pmid = 12560550 | doi = 10.1126/science.1079605 }}</ref>.
Мономер комплекса II в [[митохондрии|митохондриях]] [[млекопитающие|млекопитающих]], [[простейшие|простейших]], [[Грибы|грибов]] и многих [[Бактерии|бактерий]] состоит из четырёх [[Белковые субъединицы|субъединиц]], кодируемых ядерным геномом: двух [[Гидрофобность|гидрофильных]] и двух [[Гидрофобность|гидрофобных]]. Молекулярная масса полного мономера по разным данным составляет от ~125 [[кДа]]{{sfn|Ермаков|2005|с=239}} до ~140 кДа<ref name="High Molecular Weight">{{статья |заглавие=High Molecular Weight Forms of Mammalian Respiratory Chain Complex II |издание={{Нп3|PLOS One|PLoS ONE||PLOS One}} |том=8 |номер=8 |страницы=e71869 |doi=10.1371/journal.pone.0071869 |язык=en |тип=journal |автор=Kovářová, N., Mráček, T., Nůsková, H., Holzerová, E., Vrbacký, M., Pecina, P., Hejzlarová, K., Kľučková, K., Rohlena, J., Neuzil, J., Houštěk, J. |месяц=8 |год=2013}}</ref>. Две гидрофильные субъединицы обращены в матрикс. Субъединица А представляет собой [[флавопротеин]], а субъединица B несёт железосерный белок. На субъединице A расположен ковалентно связанный [[ФАД]], и сайт связывания [[сукцинат]]а, а на B находятся три железосерных кластера: [2Fe-2S], [4Fe-4S] и [3Fe-4S]. У человека субъединица А представлена двумя изоформами (субъединицы типа I и II), эти изоформы также обнаружены у ''[[Ascaris suum]]'' и ''[[Caenorhabditis elegans]]''<ref>{{статья |заглавие=Direct evidence for two distinct forms of the flavoprotein subunit of human mitochondrial complex II (succinate-ubiquinone reductase) |издание=J. Biochem |том=134 |номер=2 |страницы=191—195 |pmid=12966066 |doi=10.1093/jb/mvg144 |язык=en |тип=journal |автор=Tomitsuka E., Hirawake H., Goto Y., Taiwaki M., Harada S., Kita K. |год=2003}}</ref>. Гидрофобные субъединицы C и D — трансмембранные белки. Вместе они образуют цитохром ''b''<sub>560</sub>, в шести [[Трансмембранный белок|трансмембранных]] α-спиралях которого расположен [[гем b|гем ''b'']] и сайт связывания [[убихинон]]а. Две молекулы [[фосфолипидов]], один [[кардиолипин]] и один [[фосфатидилэтаноламин]], которые заполняют гидрофобное пространство между субъединицами C и D ниже гема ''b''<ref name = Yankov03>{{статья |заглавие=Architecture of succinate dehydrogenase and reactive oxygen species generation |издание=Science |том=299 |номер=5607 |страницы=700—704 |pmid=12560550 |doi=10.1126/science.1079605 |язык=en |тип=journal |автор=Yankovskaya V., Horsefield R., Törnroth S., etal |месяц=1 |год=2003}}</ref>.


Комплекс II не взаимодействует с другими комплексами дыхательной цепи электронов и не входит в состав [[Супрамолекулярная химия|супрамолекулярных]] комплексов — [[респирасома|респирасом]]. Тем не менее на культурах тканей человека и крыс, а также на тканях полученных от цельных организмов, было показано, что комплекс II может образовывать каталитически активную высокомолекулярную форму из множества комплексов с молекулярным весом от 500 до 1000 кДа в интактных тканях и от 400 до 670 кДа в культурах клеток<ref name="High Molecular Weight"/>.
Комплекс II не взаимодействует с другими комплексами дыхательной цепи электронов и не входит в состав [[Супрамолекулярная химия|супрамолекулярных]] комплексов — [[респирасома|респирасом]]. Тем не менее на культурах тканей человека и крыс, а также на тканях полученных от цельных организмов, было показано, что комплекс II может образовывать каталитически активную высокомолекулярную форму из множества комплексов с молекулярным весом от 500 до 1000 кДа в интактных тканях и от 400 до 670 кДа в культурах клеток<ref name="High Molecular Weight"/>.


Значительно меньше известно о комплексе II у [[Растения|растений]], он и по сей день остаётся одним из самых неизученных комплексов растительных митохондрий. Последние эксперименты по его выделению из [[арабидопсис]]а и исследование его методом {{нп5|Белковый электрофорез|голубого нативного электрофореза|en|Gel electrophoresis of proteins}} показали, что у растений он, по-видимому, состоит из восьми субъединиц, четыре из которых идентичны субъединицам обычным комплекса II, а четыре специфичных для растений и не обнаруживаются в митохондриях других эукариот. Аналогичные результаты были получены и для [[Картофель|картофеля]]<ref>{{cite journal | author = A. Harvey Millar, Holger Eubel, Lothar Jansch, Volker Kruft, Joshua L. Heazlewood, Hans-Peter Braun| title =Mitochondrial cytochrome c oxidase and succinate dehydrogenase complexes contain plant specific subunits. | journal =Plant Mol Biol| volume =56| issue =1| pages =77-90| date =September 2004| pmid =15604729}}</ref>.
Значительно меньше известно о комплексе II у [[Растения|растений]], он и по сей день остаётся одним из самых неизученных комплексов растительных митохондрий. Последние эксперименты по его выделению из [[арабидопсис]]а и исследование его методом {{нп5|Белковый электрофорез|голубого нативного электрофореза|en|Gel electrophoresis of proteins}} показали, что у растений он, по-видимому, состоит из восьми субъединиц, четыре из которых идентичны субъединицам обычным комплекса II, а четыре специфичных для растений и не обнаруживаются в митохондриях других эукариот. Аналогичные результаты были получены и для [[Картофель|картофеля]]<ref>{{статья |заглавие=Mitochondrial cytochrome c oxidase and succinate dehydrogenase complexes contain plant specific subunits. |издание=Plant Mol Biol |том=56 |номер=1 |страницы=77—90 |pmid=15604729 |язык=en |тип=journal |автор=A. Harvey Millar, Holger Eubel, Lothar Jansch, Volker Kruft, Joshua L. Heazlewood, Hans-Peter Braun |месяц=9 |год=2004}}</ref>.


====Таблица субъединиц<ref name="pmid15989954">{{cite journal |author=Sun F, Huo X, Zhai Y, Wang A, Xu J, Su D, etal | title=Crystal structure of mitochondrial respiratory membrane protein complex II. | journal=Cell | year= 2005 | volume= 121 | issue= 7 | pages= 1043-57 | pmid=15989954 | doi=10.1016/j.cell.2005.05.025 | pmc= | url=https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/eutils/elink.fcgi?dbfrom=pubmed&tool=sumsearch.org/cite&retmode=ref&cmd=prlinks&id=15989954 }} </ref>====
====Таблица субъединиц<ref name="pmid15989954">{{статья |заглавие=Crystal structure of mitochondrial respiratory membrane protein complex II. |издание=[[Cell (журнал)|Cell]] |том=121 |номер=7 |страницы=1043—1057 |pmid=15989954 |doi=10.1016/j.cell.2005.05.025 |ссылка=https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/eutils/elink.fcgi?dbfrom=pubmed&tool=sumsearch.org/cite&retmode=ref&cmd=prlinks&id=15989954 |язык=en |тип=journal |автор=Sun F., Huo X., Zhai Y., Wang A., Xu J., Su D., etal |год=2005 |издательство={{Нп3|Cell Press}} }} </ref>====
{| border=1 class="wikitable" style="text-align:center"
{| border=1 class="wikitable" style="text-align:center"
!No.
!No.
Строка 63: Строка 63:


=== Cайт связывания убихинона===
=== Cайт связывания убихинона===
[[Участок связывания лиганда с рецептором|Сайт связывания]] [[убихинон]]а расположен в углублении, образованном субъединицами B, C и D. Здесь убихинон стабилизируется боковыми группами [[гистидин]]а-207 субъединицы B, [[серин]]ом-27 и [[аргинин]]ом-31 субъединицы C и [[тирозин]]ом-83 субъединицы D. Хиноновое кольцо окружено [[изолейцин]]ом-28 субъединицы C и [[пролин]]ом-160 субъединицы B. Эти [[Остаток (химия)|аминокислотные остатки]] вместе с [[изолейцин]]ом-209, [[триптофан]]ом-163 и [[триптофан]]ом-164 субъединицы B, и серином-27 субъединицы C, образуют гидрофобное окружение в кармане для связывания [[хинон]]а<ref>{{cite journal |author=Horsefield R, Yankovskaya V, Sexton G, etal | title = Structural and computational analysis of the quinone-binding site of complex II (succinate-ubiquinone oxidoreductase): a mechanism of electron transfer and proton conduction during ubiquinone reduction | journal = J. Biol. Chem. | volume = 281 | issue = 11 | pages = 7309–16 |date=March 2006 | pmid = 16407191 | doi = 10.1074/jbc.M508173200 }}</ref>.
[[Участок связывания лиганда с рецептором|Сайт связывания]] [[убихинон]]а расположен в углублении, образованном субъединицами B, C и D. Здесь убихинон стабилизируется боковыми группами [[гистидин]]а-207 субъединицы B, [[серин]]ом-27 и [[аргинин]]ом-31 субъединицы C и [[тирозин]]ом-83 субъединицы D. Хиноновое кольцо окружено [[изолейцин]]ом-28 субъединицы C и [[пролин]]ом-160 субъединицы B. Эти [[Остаток (химия)|аминокислотные остатки]] вместе с [[изолейцин]]ом-209, [[триптофан]]ом-163 и [[триптофан]]ом-164 субъединицы B, и серином-27 субъединицы C, образуют гидрофобное окружение в кармане для связывания [[хинон]]а<ref>{{статья |заглавие=Structural and computational analysis of the quinone-binding site of complex II (succinate-ubiquinone oxidoreductase): a mechanism of electron transfer and proton conduction during ubiquinone reduction |издание=[[Journal of Biological Chemistry|J. Biol. Chem.]] |том=281 |номер=11 |страницы=7309—7316 |pmid=16407191 |doi=10.1074/jbc.M508173200 |язык=en |тип=journal |автор=Horsefield R., Yankovskaya V., Sexton G., etal |месяц=3 |год=2006}}</ref>.


=== Сайт связывания сукцината ===
=== Сайт связывания сукцината ===
На субъединице A расположен сайт связывания и окисления сукцината. [[Боковые группы]] тирозина-254, гистидина-354 и аргинина-399 этой субъединицы стабилизируют молекулу сукцината в то время как [[ФАД]] окисляется и передаёт [[электрон]]ы на первый [[железосерные кластеры|железосерный кластер]], [2Fe-2S]<ref>{{cite journal | author = Kenney WC | title = The reaction of N-ethylmaleimide at the active site of succinate dehydrogenase | journal = J. Biol. Chem. | volume = 250 | issue = 8 | pages = 3089–94 |date=April 1975 | pmid = 235539 }}</ref>.
На субъединице A расположен сайт связывания и окисления сукцината. [[Боковые группы]] тирозина-254, гистидина-354 и аргинина-399 этой субъединицы стабилизируют молекулу сукцината в то время как [[ФАД]] окисляется и передаёт [[электрон]]ы на первый [[железосерные кластеры|железосерный кластер]], [2Fe-2S]<ref>{{статья |заглавие=The reaction of N-ethylmaleimide at the active site of succinate dehydrogenase |издание=[[Journal of Biological Chemistry|J. Biol. Chem.]] |том=250 |номер=8 |страницы=3089—3094 |pmid=235539 |язык=en |тип=journal |автор=Kenney W.C. |месяц=4 |год=1975}}</ref>.


=== Редокс-центры ===
=== Редокс-центры ===
Строка 85: Строка 85:
О точном [[Механизм реакции|механизме]] окисления сукцината известно довольно мало. [[Рентгеноструктурный анализ]] выявил, что [[ФАД]], [[глутамат]]-255, [[аргинин]]-286, и [[гистидин]]-242 субъединицы A могут быть кандидатами для осуществления реакции депротонирования. Существует два возможных механизма этой реакции [[Реакции элиминирования|элиминирования]] (отщепления): E2 и E1cb. В случая E2 — это согласованный механизм. Основные [[остаток (химия)|остатки]] или [[Коферменты|кофактор]] депротонируют альфа углерод, а [[ФАД]] принимает [[гидрид]]-анион от бета углерода, окисляя [[сукцинат]] до [[фумарат]]а — см. рис. 1. В случае механизма E1cb, прежде чем [[ФАД]] присоединит гидрид-анион, образуется [[Енолы|енольная]] форма сукцината, как это показано на рис. 2. Что бы определить какой механизм имеет место на самом деле, требуется провести дополнительные исследования сукцинатдегидрогеназы.
О точном [[Механизм реакции|механизме]] окисления сукцината известно довольно мало. [[Рентгеноструктурный анализ]] выявил, что [[ФАД]], [[глутамат]]-255, [[аргинин]]-286, и [[гистидин]]-242 субъединицы A могут быть кандидатами для осуществления реакции депротонирования. Существует два возможных механизма этой реакции [[Реакции элиминирования|элиминирования]] (отщепления): E2 и E1cb. В случая E2 — это согласованный механизм. Основные [[остаток (химия)|остатки]] или [[Коферменты|кофактор]] депротонируют альфа углерод, а [[ФАД]] принимает [[гидрид]]-анион от бета углерода, окисляя [[сукцинат]] до [[фумарат]]а — см. рис. 1. В случае механизма E1cb, прежде чем [[ФАД]] присоединит гидрид-анион, образуется [[Енолы|енольная]] форма сукцината, как это показано на рис. 2. Что бы определить какой механизм имеет место на самом деле, требуется провести дополнительные исследования сукцинатдегидрогеназы.


После завершения реакции [[фумарат]], который слабо связан с активным центром фермента, легко диссоциирует. Существуют данные из которых следует, что цитозольный субстратсвязывающий домен сукцинатдегидрогеназы претерпевает конформационные изменения: после ухода продукта фермент находится в открытом виде, а связав новый субстрат, переходит в закрытое состояние, плотно смыкаясь вокруг него<ref name="NNN">{{cite journal | author =T.M. Iverson| title =Catalytic mechanisms of complex II enzymes: A structural perspective| journal = Biochimica et Biophysica Acta | volume =1827| issue = 5 | pages = 648–657| year = 2013| month =May | pmid = | doi =10.1016/j.bbabio.2012.09.008}}</ref>.
После завершения реакции [[фумарат]], который слабо связан с активным центром фермента, легко диссоциирует. Существуют данные из которых следует, что цитозольный субстратсвязывающий домен сукцинатдегидрогеназы претерпевает конформационные изменения: после ухода продукта фермент находится в открытом виде, а связав новый субстрат, переходит в закрытое состояние, плотно смыкаясь вокруг него<ref name="NNN">{{статья |заглавие=Catalytic mechanisms of complex II enzymes: A structural perspective |издание={{Нп3|Biochimica et Biophysica Acta}} |том=1827 |номер=5 |страницы=648—657 |doi=10.1016/j.bbabio.2012.09.008 |язык=en |тип=journal |автор=T.M. Iverson |месяц=5 |год=2013}}</ref>.


=== Перенос электронов ===
=== Перенос электронов ===
Строка 100: Строка 100:
Хотя точная функция [[Гем (биохимия)|гем]]а сукцинатдегидрогеназы всё ещё не известна, некоторые исследователи утверждают, что первый [[электрон]], поступающий к [[убихинон]]у через [3Fe-4S], может быстро перемещаться вперёд-назад между гемом и связанным убихиноном. Таким образом гем играет роль стока электронов, предотвращая их взаимодействие с молекулярным кислородом, которое привело бы к образованию [[Активные формы кислорода|активных форм кислорода]].
Хотя точная функция [[Гем (биохимия)|гем]]а сукцинатдегидрогеназы всё ещё не известна, некоторые исследователи утверждают, что первый [[электрон]], поступающий к [[убихинон]]у через [3Fe-4S], может быстро перемещаться вперёд-назад между гемом и связанным убихиноном. Таким образом гем играет роль стока электронов, предотвращая их взаимодействие с молекулярным кислородом, которое привело бы к образованию [[Активные формы кислорода|активных форм кислорода]].


Также есть предположение, что для того, чтобы не давать электрону напрямую попадать с кластера [3Fe-4S] на гем, действует специальный воротный механизм. Вероятный кандидат на роль ворот — [[гистидин]]-207 субъединицы B, который расположен прямо между железосерным кластером и гемом, неподалёку от связанного убихинона; вероятно, он может управлять потоком электронов между этими редокс-центрами<ref name="hem">{{cite journal | author = Tran QM, Rothery RA, Maklashina E, Cecchini G, Weiner JH | title = The quinone binding site in Escherichia coli succinate dehydrogenase is required for electron transfer to the heme b | journal = J. Biol. Chem. | volume = 281 | issue = 43 | pages = 32310–7 |date=October 2006 | pmid = 16950775 | doi = 10.1074/jbc.M607476200 }}</ref>.
Также есть предположение, что для того, чтобы не давать электрону напрямую попадать с кластера [3Fe-4S] на гем, действует специальный воротный механизм. Вероятный кандидат на роль ворот — [[гистидин]]-207 субъединицы B, который расположен прямо между железосерным кластером и гемом, неподалёку от связанного убихинона; вероятно, он может управлять потоком электронов между этими редокс-центрами<ref name="hem">{{статья |заглавие=The quinone binding site in Escherichia coli succinate dehydrogenase is required for electron transfer to the heme b |издание=[[Journal of Biological Chemistry|J. Biol. Chem.]] |том=281 |номер=43 |страницы=32310—32317 |pmid=16950775 |doi=10.1074/jbc.M607476200 |язык=en |тип=journal |автор=Tran Q.M., Rothery R.A., Maklashina E., Cecchini G., Weiner J.H. |месяц=10 |год=2006}}</ref>.


== Ингибиторы ==
== Ингибиторы ==
Существует два класса ингибиторов комплекса II: одни блокируют карман для связывания сукцината, а другие — карман для связывания [[убихинол]]а. К ингибиторам, имитирующем убихинол, относятся [[карбоксин]] и [[теноилтрифторацетон]]. К ингибиторам-аналогам сукцината принадлежит синтетическое соединение [[малонат]] а также компоненты [[Восстановительный цикл трикарбоновых кислот|цикла Кребса]], [[малат]] и [[оксалоацетат]]. Интересно, что оксалоацетат является одним из самых сильных ингибиторов комплекса II. По какой причине обычный метаболит цикла трикарбоновых кислот ингибирует комплекс II остаётся не ясным, хотя предполагают, что таким образом он может выполнять защитную роль, сводя к минимуму [[НАДН-дегидрогеназный комплекс#Реакция|обратный транспорт электронов в комплексе I]], в результате которого происходит образование [[супероксид]]а<ref>{{cite journal |author=Muller FL, Liu Y, Abdul-Ghani MA, etal | title = High rates of superoxide production in skeletal-muscle mitochondria respiring on both complex I- and complex II-linked substrates | journal = Biochem. J. | volume = 409 | issue = 2 | pages = 491–9 |date=January 2008 | pmid = 17916065 | doi = 10.1042/BJ20071162}}</ref>.
Существует два класса ингибиторов комплекса II: одни блокируют карман для связывания сукцината, а другие — карман для связывания [[убихинол]]а. К ингибиторам, имитирующем убихинол, относятся [[карбоксин]] и [[теноилтрифторацетон]]. К ингибиторам-аналогам сукцината принадлежит синтетическое соединение [[малонат]] а также компоненты [[Восстановительный цикл трикарбоновых кислот|цикла Кребса]], [[малат]] и [[оксалоацетат]]. Интересно, что оксалоацетат является одним из самых сильных ингибиторов комплекса II. По какой причине обычный метаболит цикла трикарбоновых кислот ингибирует комплекс II остаётся не ясным, хотя предполагают, что таким образом он может выполнять защитную роль, сводя к минимуму [[НАДН-дегидрогеназный комплекс#Реакция|обратный транспорт электронов в комплексе I]], в результате которого происходит образование [[супероксид]]а<ref>{{статья |заглавие=High rates of superoxide production in skeletal-muscle mitochondria respiring on both complex I- and complex II-linked substrates |издание={{Нп3|Biochemical Journal|Biochem. J.||Biochemical Journal}} |том=409 |номер=2 |страницы=491—499 |pmid=17916065 |doi=10.1042/BJ20071162 |язык=en |тип=journal |автор=Muller F.L., Liu Y., Abdul-Ghani M.A., etal |месяц=1 |год=2008}}</ref>.


Ингибиторы, имитирующие убихинол, использовались как [[фунгициды]] в сельском хозяйстве начиная с 1960-х годов. Например, карбоксин в основном использовался для заболеваний вызванных [[Базидиомицеты|базидиомицетами]], такими как стеблевы ржавчины и заболевания вызванные ''[[Rhizoctonia]]''. В последнее время им на смену пришли другие соединения с более широким спектром подавляемых патогенов. К таким соединениям относятся [[боскалид]], [[пентиопирад]] и [[флуопирам]]<ref>{{Cite journal | author= Avenot H. F., Michailides T. J., | doi = 10.1016/j.cropro.2010.02.019 | title = Progress in understanding molecular mechanisms and evolution of resistance to succinate dehydrogenase inhibiting (SDHI) fungicides in phytopathogenic fungi | journal = Crop Protection | volume = 29 | issue = 7 | pages = 643 | year = 2010 | pmid = | pmc = }}</ref>. Некоторые сельскохозяйственно значимые грибы не восприимчивы к действию этого нового поколения ингибиторов<ref>{{Cite journal | author= Dubos T., Pasquali M., Pogoda F., Casanova A. L., Hoffmann L., Beyer M., | doi = 10.1016/j.pestbp.2012.11.004 | title = Differences between the succinate dehydrogenase sequences of isopyrazam sensitive Zymoseptoria tritici and insensitive Fusarium graminearum strains | journal = Pesticide Biochemistry and Physiology | volume = 105 | pages = 28 | year = 2013 | pmid = | pmc = }}</ref>.
Ингибиторы, имитирующие убихинол, использовались как [[фунгициды]] в сельском хозяйстве начиная с 1960-х годов. Например, карбоксин в основном использовался для заболеваний вызванных [[Базидиомицеты|базидиомицетами]], такими как стеблевы ржавчины и заболевания вызванные ''[[Rhizoctonia]]''. В последнее время им на смену пришли другие соединения с более широким спектром подавляемых патогенов. К таким соединениям относятся [[боскалид]], [[пентиопирад]] и [[флуопирам]]<ref>{{статья |doi=10.1016/j.cropro.2010.02.019 |заглавие=Progress in understanding molecular mechanisms and evolution of resistance to succinate dehydrogenase inhibiting (SDHI) fungicides in phytopathogenic fungi |издание=Crop Protection |том=29 |номер=7 |страницы=643 |язык=en |тип=journal |автор=Avenot H. F., Michailides T. J., |год=2010}}</ref>. Некоторые сельскохозяйственно значимые грибы не восприимчивы к действию этого нового поколения ингибиторов<ref>{{статья |doi=10.1016/j.pestbp.2012.11.004 |заглавие=Differences between the succinate dehydrogenase sequences of isopyrazam sensitive Zymoseptoria tritici and insensitive Fusarium graminearum strains |издание=Pesticide Biochemistry and Physiology |том=105 |страницы=28 |язык=en |тип=journal |автор=Dubos T., Pasquali M., Pogoda F., Casanova A. L., Hoffmann L., Beyer M., |год=2013}}</ref>.


== Роль в заболеваниях ==
== Роль в заболеваниях ==
Строка 151: Строка 151:
}}
}}


{{внешние ссылки}}
[[Категория:Клеточное дыхание]]
[[Категория:Клеточное дыхание]]
[[Категория:Цикл трикарбоновых кислот]]
[[Категория:Цикл трикарбоновых кислот]]

Версия от 22:57, 1 июля 2019

Сукцинатдегидрогеназа
Идентификаторы
Шифр КФ 1.3.5.1
Номер CAS 9028-11-9
Базы ферментов
IntEnz IntEnz view
BRENDA BRENDA entry
ExPASy NiceZyme view
MetaCyc metabolic pathway
KEGG KEGG entry
PRIAM profile
PDB structures RCSB PDB PDBe PDBj PDBsum
Gene Ontology AmiGO • EGO
Поиск
PMC статьи
PubMed статьи
NCBI NCBI proteins
CAS 9028-11-9
Логотип Викисклада Медиафайлы на Викискладе

Сукцинатдегидрогеназа или сукцинат-убихинон-оксидорекдуктаза, также известная как комплекс II — белковый комплекс, расположенный во внутренней мембране митохондрий и мембранах многих прокариотических организмов. Одновременно участвует в цикле трикарбоновых кислот и дыхательной цепи переноса электронов.

На шестой стадии цикла трикарбоновых кислот сукцинатдегидрогеназа катализирует окисление сукцината до фумарата, восстанавливая убихинон до убихинола[1].

История

В 1910 году учёный Танберг обнаружил, что изолированная мышечная ткань животных способна окислять сукцинат (янтарную кислоту)[2], из чего был сделан вывод, что для осуществления этой реакции есть некий фермент. Неизвестный фермент, позже идентифицированный как сукцинатдегидрогеназа, стал предметом активных исследований начиная с 1950-х годов, когда на гребне активно развивавшейся биохимии и исследований клеточного дыхания зарождалась биоэнергетика. В 1954 году американскому учёному Томасу П. Сингеру впервые удалось выделить очищенную сукцинатдегидрогеназу в виде раствора[3]. Доступность растворимой формы фермента ознаменовала прорыв в исследованиях, и за последующие пятнадцать лет были идентифицированы все основные компоненты сукцинатдегидрогеназного комплекса. Из ранних исследований растворимой формы стало понятно, что этот белок содержит железо и флавин. Сукцинатдегидрогениаза оказалась первым исследованным белком, у которого был обнаружен ковалентно присоединённый флавинадениндинуклеотид. Кроме того, фермент содержал лабильные атомы серы[4].

В 1959 году, сразу же после открытия кофермента Q, Циглер и Доик выделили сукцинатдегидрогеназу, которая была растворена в холевой кислоте, содержала флавин, железо и гем и могла восстанавливать коэнзим Q. Эти результаты кардинально отличались от тех, которые были получены при исследовании водорастворимой сукцинатдегидрогеназы, которая не содержала гема и не могла восстанавливать коэнзим Q. Возникшее противоречие дало начало ожесточённым спорам о правильности и качестве процедур выделения и возможном загрязнении, которые продолжались вплоть до начала 1970-х годов. В начале 60-х годов сформировалось представление о дыхательной цепи переноса электронов, а в результате проводившихся экспериментов, в 1962 году удалось выделить три первых дыхательных комплекса. Выделенный из митохондрий комплекс с сукцинатдегидрогеназной активностью получил название дыхательный комплекс II и несколько позже был отождествлён с водорастворимой сукцинатдегидрогеназой. Следует отметить, что убедительно показать наличие в сукцинатдегидрогеназе железосерных кластеров и определить их строение удалось только 30 лет спустя после её выделение. Этого удалось добиться с появлением новых методик ЭПР, которые были испробованы на этом ферменте[4].

Структурная организация комплекса II

Субъединицы сукцинатдегидрогеназы

Мономер комплекса II в митохондриях млекопитающих, простейших, грибов и многих бактерий состоит из четырёх субъединиц, кодируемых ядерным геномом: двух гидрофильных и двух гидрофобных. Молекулярная масса полного мономера по разным данным составляет от ~125 кДа[1] до ~140 кДа[5]. Две гидрофильные субъединицы обращены в матрикс. Субъединица А представляет собой флавопротеин, а субъединица B несёт железосерный белок. На субъединице A расположен ковалентно связанный ФАД, и сайт связывания сукцината, а на B находятся три железосерных кластера: [2Fe-2S], [4Fe-4S] и [3Fe-4S]. У человека субъединица А представлена двумя изоформами (субъединицы типа I и II), эти изоформы также обнаружены у Ascaris suum и Caenorhabditis elegans[6]. Гидрофобные субъединицы C и D — трансмембранные белки. Вместе они образуют цитохром b560, в шести трансмембранных α-спиралях которого расположен гем b и сайт связывания убихинона. Две молекулы фосфолипидов, один кардиолипин и один фосфатидилэтаноламин, которые заполняют гидрофобное пространство между субъединицами C и D ниже гема b[7].

Комплекс II не взаимодействует с другими комплексами дыхательной цепи электронов и не входит в состав супрамолекулярных комплексов — респирасом. Тем не менее на культурах тканей человека и крыс, а также на тканях полученных от цельных организмов, было показано, что комплекс II может образовывать каталитически активную высокомолекулярную форму из множества комплексов с молекулярным весом от 500 до 1000 кДа в интактных тканях и от 400 до 670 кДа в культурах клеток[5].

Значительно меньше известно о комплексе II у растений, он и по сей день остаётся одним из самых неизученных комплексов растительных митохондрий. Последние эксперименты по его выделению из арабидопсиса и исследование его методом голубого нативного электрофореза[англ.] показали, что у растений он, по-видимому, состоит из восьми субъединиц, четыре из которых идентичны субъединицам обычным комплекса II, а четыре специфичных для растений и не обнаруживаются в митохондриях других эукариот. Аналогичные результаты были получены и для картофеля[8].

Таблица субъединиц[9]

No. Субъединица Белок человека Молекулярная масса Семейство белков Pfam
1 SdhA SDHA_HUMAN 72 кДа Pfam PF00890, Pfam PF02910
2 SdhB SDHB_HUMAN 30 кДа Pfam PF13085, Pfam PF13183
3 SdhC CDHB_HUMAN 18 кДа Pfam PF01127
4 SdhD DHSD_HUMAN 15 кДа Pfam PF05328

Cайт связывания убихинона

Сайт связывания убихинона расположен в углублении, образованном субъединицами B, C и D. Здесь убихинон стабилизируется боковыми группами гистидина-207 субъединицы B, серином-27 и аргинином-31 субъединицы C и тирозином-83 субъединицы D. Хиноновое кольцо окружено изолейцином-28 субъединицы C и пролином-160 субъединицы B. Эти аминокислотные остатки вместе с изолейцином-209, триптофаном-163 и триптофаном-164 субъединицы B, и серином-27 субъединицы C, образуют гидрофобное окружение в кармане для связывания хинона[10].

Сайт связывания сукцината

На субъединице A расположен сайт связывания и окисления сукцината. Боковые группы тирозина-254, гистидина-354 и аргинина-399 этой субъединицы стабилизируют молекулу сукцината в то время как ФАД окисляется и передаёт электроны на первый железосерный кластер, [2Fe-2S][11].

Редокс-центры

Сайт связывания сукцината и сайт связывания убихинона соединены цепочкой из редокс-центров, состоящей из ФАД и трёх железосерных кластеров. Эта цепочка простирается на 40 Å через всё тело фермента. Приблизительная дистанция между кофакторами не превышает физиологический предел для переноса электронов в 14 Å[7].

Механизм реакции

Комплекс II окисляет сукцинат до фумарата и восстанавливает убихинон:

Сукцинат + Q → Фумарат + QH2

Электроны от сукцината сначала переносятся на ФАД, а затем через кластеры Fe-S на Q. Электронный транспорт в комплексе не сопровождается генерацией протонного градиента. Образовавшиеся при окислении сукцината 2H+ остаются на той же стороне мембраны, то есть в матриксе, и затем снова поглощаются при восстановлении хинона. Таким образом комплекс II не вносит вклада в создание протонного градиента на мембране и работает только как переносчик электронов от сукцината к убихинону[12][13].

Рис. 1: Механизм окисления сукцината E2.
Рис. 2: Механизм окисления сукцината E1cb.

Окисление сукцината

О точном механизме окисления сукцината известно довольно мало. Рентгеноструктурный анализ выявил, что ФАД, глутамат-255, аргинин-286, и гистидин-242 субъединицы A могут быть кандидатами для осуществления реакции депротонирования. Существует два возможных механизма этой реакции элиминирования (отщепления): E2 и E1cb. В случая E2 — это согласованный механизм. Основные остатки или кофактор депротонируют альфа углерод, а ФАД принимает гидрид-анион от бета углерода, окисляя сукцинат до фумарата — см. рис. 1. В случае механизма E1cb, прежде чем ФАД присоединит гидрид-анион, образуется енольная форма сукцината, как это показано на рис. 2. Что бы определить какой механизм имеет место на самом деле, требуется провести дополнительные исследования сукцинатдегидрогеназы.

После завершения реакции фумарат, который слабо связан с активным центром фермента, легко диссоциирует. Существуют данные из которых следует, что цитозольный субстратсвязывающий домен сукцинатдегидрогеназы претерпевает конформационные изменения: после ухода продукта фермент находится в открытом виде, а связав новый субстрат, переходит в закрытое состояние, плотно смыкаясь вокруг него[14].

Перенос электронов

Рис. 3 Механизм восстановления убихинона.
Рис. 4 Путь электрона в дыхательном комплексе II.

В результате окисления сукцината его электроны переносятся на ФАД, а затем передаются по цепи из железосерных кластеров от кластера [Fe-S] к [3Fe-4S]. Там эти электроны переносятся на ожидающую в сайте связывания молекулу убихинона.

Восстановление убихинона

В активном сайте убихинон стабилизирован за счёт водородных связей между его карбонильным атомом кислорода в первом положении и тирозином-83 субъединицы D. Переход электронов на железосерный кластер [3Fe-4S] заставляет убихинон перейти в другое положение. В результате образуется вторая водородная связь между карбонильной группой убихинона в четвёртом положении и серином-27 субъединицы C. После того как в процессе восстановления убихинон принимает первый электрон, он превращается в активный радикал семихинон, который после связывания второго электрона от кластера [3Fe-4S] полностью восстанавливается до убихинола. Полный механизм восстановления убихинона изображён на рисунке 3[15].

Гем b

Хотя точная функция гема сукцинатдегидрогеназы всё ещё не известна, некоторые исследователи утверждают, что первый электрон, поступающий к убихинону через [3Fe-4S], может быстро перемещаться вперёд-назад между гемом и связанным убихиноном. Таким образом гем играет роль стока электронов, предотвращая их взаимодействие с молекулярным кислородом, которое привело бы к образованию активных форм кислорода.

Также есть предположение, что для того, чтобы не давать электрону напрямую попадать с кластера [3Fe-4S] на гем, действует специальный воротный механизм. Вероятный кандидат на роль ворот — гистидин-207 субъединицы B, который расположен прямо между железосерным кластером и гемом, неподалёку от связанного убихинона; вероятно, он может управлять потоком электронов между этими редокс-центрами[15].

Ингибиторы

Существует два класса ингибиторов комплекса II: одни блокируют карман для связывания сукцината, а другие — карман для связывания убихинола. К ингибиторам, имитирующем убихинол, относятся карбоксин и теноилтрифторацетон. К ингибиторам-аналогам сукцината принадлежит синтетическое соединение малонат а также компоненты цикла Кребса, малат и оксалоацетат. Интересно, что оксалоацетат является одним из самых сильных ингибиторов комплекса II. По какой причине обычный метаболит цикла трикарбоновых кислот ингибирует комплекс II остаётся не ясным, хотя предполагают, что таким образом он может выполнять защитную роль, сводя к минимуму обратный транспорт электронов в комплексе I, в результате которого происходит образование супероксида[16].

Ингибиторы, имитирующие убихинол, использовались как фунгициды в сельском хозяйстве начиная с 1960-х годов. Например, карбоксин в основном использовался для заболеваний вызванных базидиомицетами, такими как стеблевы ржавчины и заболевания вызванные Rhizoctonia. В последнее время им на смену пришли другие соединения с более широким спектром подавляемых патогенов. К таким соединениям относятся боскалид, пентиопирад и флуопирам[17]. Некоторые сельскохозяйственно значимые грибы не восприимчивы к действию этого нового поколения ингибиторов[18].

Роль в заболеваниях

Фундаментальная роль сукцинатдегидрогеназы в цепи переноса электронов митохондрий делает её жизненно важной для большинства многоклеточных организмов, делеция генов этого фермента из генома летальна, что было показано на ранних эмбрионах мышей.

Сукцинатдегидрогеназа млекопитающих участвует не только в образовании энергии в митохондриях, но также играет роль в чувствительности клетки к кислороду и подавлении опухолей; сейчас эти свойства являются объектом пристального изучения[19][20].

См. также

Примечания

  1. ↑ 1 2 Ермаков, 2005, с. 239.
  2. ↑ T. Thunberg, Skand. Arch. Physiol., 24 (1910) 23; 41 (1920)1
  3. ↑ Singer, T. P., Kearney, E. B. and Kenney, W. C. Succinate Dehydrogenase, in Advances in Enzymology and Related Areas of Molecular Biology / ed. A. Meister. — New York, USA.: John Wiley & Sons, Inc., 1973. — Vol. 37. — (Advances in Enzymology - and Related Areas of Molecular Biology). — ISBN 9780470122822.
  4. ↑ 1 2 Handbook of Flavoproteins: Volume 2 Complex Flavoproteins, Dehydrogenases and Physical Methods / edited by Russ Hille, Susan Miller, Bruce Palfey. — 1 edition. — Berlin: Walter de Gruyter & Co, 30 Jun. 2013. — Vol. 2. — P. 141-143. — 436 p. — ISBN 978-3110298284.
  5. ↑ 1 2 Kovářová, N., Mráček, T., Nůsková, H., Holzerová, E., Vrbacký, M., Pecina, P., Hejzlarová, K., Kľučková, K., Rohlena, J., Neuzil, J., Houštěk, J. High Molecular Weight Forms of Mammalian Respiratory Chain Complex II (англ.) // PLoS ONE?! : journal. — 2013. — August (vol. 8, no. 8). — P. e71869. — doi:10.1371/journal.pone.0071869.
  6. ↑ Tomitsuka E., Hirawake H., Goto Y., Taiwaki M., Harada S., Kita K. Direct evidence for two distinct forms of the flavoprotein subunit of human mitochondrial complex II (succinate-ubiquinone reductase) (англ.) // J. Biochem : journal. — 2003. — Vol. 134, no. 2. — P. 191—195. — doi:10.1093/jb/mvg144. — PMID 12966066.
  7. ↑ 1 2 Yankovskaya V., Horsefield R., Törnroth S., etal. Architecture of succinate dehydrogenase and reactive oxygen species generation (англ.) // Science : journal. — 2003. — January (vol. 299, no. 5607). — P. 700—704. — doi:10.1126/science.1079605. — PMID 12560550.
  8. ↑ A. Harvey Millar, Holger Eubel, Lothar Jansch, Volker Kruft, Joshua L. Heazlewood, Hans-Peter Braun. Mitochondrial cytochrome c oxidase and succinate dehydrogenase complexes contain plant specific subunits. (англ.) // Plant Mol Biol : journal. — 2004. — September (vol. 56, no. 1). — P. 77—90. — PMID 15604729.
  9. ↑ Sun F., Huo X., Zhai Y., Wang A., Xu J., Su D., etal. Crystal structure of mitochondrial respiratory membrane protein complex II. (англ.) // Cell : journal. — Cell Press?!, 2005. — Vol. 121, no. 7. — P. 1043—1057. — doi:10.1016/j.cell.2005.05.025. — PMID 15989954.
  10. ↑ Horsefield R., Yankovskaya V., Sexton G., etal. Structural and computational analysis of the quinone-binding site of complex II (succinate-ubiquinone oxidoreductase): a mechanism of electron transfer and proton conduction during ubiquinone reduction (англ.) // J. Biol. Chem. : journal. — 2006. — March (vol. 281, no. 11). — P. 7309—7316. — doi:10.1074/jbc.M508173200. — PMID 16407191.
  11. ↑ Kenney W.C. The reaction of N-ethylmaleimide at the active site of succinate dehydrogenase (англ.) // J. Biol. Chem. : journal. — 1975. — April (vol. 250, no. 8). — P. 3089—3094. — PMID 235539.
  12. ↑ Нельсон, Кокс, 2012, с. 331-333.
  13. ↑ Ермаков, 2005, с. 240.
  14. ↑ T.M. Iverson. Catalytic mechanisms of complex II enzymes: A structural perspective (англ.) // Biochimica et Biophysica Acta[англ.] : journal. — 2013. — May (vol. 1827, no. 5). — P. 648—657. — doi:10.1016/j.bbabio.2012.09.008.
  15. ↑ 1 2 Tran Q.M., Rothery R.A., Maklashina E., Cecchini G., Weiner J.H. The quinone binding site in Escherichia coli succinate dehydrogenase is required for electron transfer to the heme b (англ.) // J. Biol. Chem. : journal. — 2006. — October (vol. 281, no. 43). — P. 32310—32317. — doi:10.1074/jbc.M607476200. — PMID 16950775.
  16. ↑ Muller F.L., Liu Y., Abdul-Ghani M.A., etal. High rates of superoxide production in skeletal-muscle mitochondria respiring on both complex I- and complex II-linked substrates (англ.) // Biochem. J.[англ.] : journal. — 2008. — January (vol. 409, no. 2). — P. 491—499. — doi:10.1042/BJ20071162. — PMID 17916065.
  17. ↑ Avenot H. F., Michailides T. J.,. Progress in understanding molecular mechanisms and evolution of resistance to succinate dehydrogenase inhibiting (SDHI) fungicides in phytopathogenic fungi (англ.) // Crop Protection : journal. — 2010. — Vol. 29, no. 7. — P. 643. — doi:10.1016/j.cropro.2010.02.019.
  18. ↑ Dubos T., Pasquali M., Pogoda F., Casanova A. L., Hoffmann L., Beyer M.,. Differences between the succinate dehydrogenase sequences of isopyrazam sensitive Zymoseptoria tritici and insensitive Fusarium graminearum strains (англ.) // Pesticide Biochemistry and Physiology : journal. — 2013. — Vol. 105. — P. 28. — doi:10.1016/j.pestbp.2012.11.004.
  19. ↑ Bardella Chiara, Pollard Patrick J., Tomlinson Ian. SDH mutations in cancer // Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Bioenergetics. — 2011. — Ноябрь (т. 1807, № 11). — С. 1432—1443. — ISSN 0005-2728. — doi:10.1016/j.bbabio.2011.07.003. [исправить]
  20. ↑ Yang Ming, Pollard Patrick J. Succinate: A New Epigenetic Hacker // Cancer Cell. — 2013. — Июнь (т. 23, № 6). — С. 709—711. — ISSN 1535-6108. — doi:10.1016/j.ccr.2013.05.015. [исправить]

Литература

  • Физиология растений / Под ред. И. П. Ермакова. — М.: Академия, 2005. — 634 с.
  • Дэвид Л. Нельсон, Майкл М. Кокс. Основы биохимии Ленинджера. Биоэнергетика и метаболизм. = Leninger Principles of Biochemistry. — Бином. Лаборатория знаний, 2012. — Т. 2. — 692 с. — (Лучший зарубежный учебник). — ISBN 978-5-94774-365-4.
Источник — https://ru.wikipedia.org/ruwiki/w/index.php?title=Сукцинатдегидрогеназа&oldid=100759682