Проточная цитометрия

Материал из Википедии — свободной энциклопедии
Это старая версия этой страницы, сохранённая РобоСтася (обсуждение | вклад) в 14:36, 6 марта 2009 (+ {{тупиковая статья}} с помощью AWB). Она может серьёзно отличаться от текущей версии.
Перейти к навигации Перейти к поиску

Проточная цитометрия

Проточная цитометрия является современной технологией быстрого оптического измерения параметров клетки, ее органелл и происходящих в ней процессов.

Методика заключается в выявлении рассеяния света лазерного луча при прохождении через него клетки в струе жидкости, причём, степень световой дисперсии позволяет получить представление о размерах и структуре клетки. Кроме того, в ходе анализа учитывается уровень флуоресценции химических соединений, входящих в состав клеточной стенки (аутофлуоресценция) или внесённых в образец перед проведением проточной цитометрии.

Образцы для проточной цитометрии

  • кровь
  • костный мозг
  • ликвор
  • суставная жидкость
  • плевральная жидкость
  • асциты
  • клетки тканей (например, опухолей)

Принцип метода

Клеточная суспензия, предварительно меченная флюоресцирующими моноклональными антителами или флуоресцентными красителями, попадает в поток жидкости, проходящий через проточную ячейку. Условия подобраны таким образом, что клетки выстраиваются друг за другом за счет т. н. гидродинамического фокусирования струи в струе. В момент пересечения клеткой лазерного луча детекторы фиксируют:

  • рассеяние света под малыми углами (от 1° до 10°) (данная характеристика используется для определения размеров клеток).
  • рассеяние света под углом 90° (позволяет судить о соотношении ядро/цитоплазма, а так же о неоднородности и гранулярности клеток).
  • интенсивность флуоресценции по 4-ем каналам флуоресцентности (позволяет определить субпопуляционный состав клеточной суспензии и др.)

Наиболее часто используемые флуорохромы

  • флуоресцеина изотиоцианат (FITC)
  • Фикоэритрин (PE, RD1)
  • Перидинин-Хлорофилл Протеин (Per-CP)
  • Алофикоцианин (APC)

Тандемные красители:

  • Фикоэритрин - Техасский красный (ECD)
  • Фикоэритрин - Cy5 (PC5)
  • Фикоэритрин - Cy7 (PC7)

Преимущества метода

  • короткое время анализа (сек) за счет высокой скорости
  • анализ большого количества клеток (до 107 клеток)
  • логические ограничения допускают детектирование субпопуляций клеток
  • измерение параметров редко встречающихся клеток
  • объективное измерение интенсивности флуоресценции

Область применения

Иммунология

  • иммунофенотипирование клеток периферической крови
  • исследование иммунного статуса
  • определение фагоцитарной активности
  • определение внутриклеточных цитокинов

Онкология

  • количественный анализ внутриклеточных компонентов (ДНК)
  • анализ стадий клеточного цикла
  • выявление ануплоидного клона
  • определение пролиферативной активности ануплоидного клона
  • определение специфических маркеров
  • позволяет проводить наблюдение пациентов, входящих в группу риска

Цитология

  • определение цитоморфологической принадлежности клетки размер, соотношение ядро/цитоплазма, степень асимметричности и гранулярности клеток
  • оценка активности внутриклеточных ферментов с помощью флуорогенных субстратов
  • определение экспрессии поверхностных антигенов
  • анализ стадий клеточного цикла
  • измерение физиологических параметров клетки (внутриклеточный pH, концентрация свободных ионов Ca2+, потенциал наружной клеточной мембраны)

Гематология

  • анализ субпопуляционного состава клеток периферической крови
  • подсчет ретикулоцитов, анализ тромбоцитов по специфическим маркерам

Фармакология

  • измерение экспрессии маркеров
  • измерение активности внутриклеточных ферментов
  • определений стадий клеточного цикла в рамках изучения механизмов воздействия различных биологически активных веществ на клеточном уровне

В настоящее время проточная цитометрия применяется для выявления определённых клеток в исследуемых образцах (как бактериальных и грибковых, так и собственных клеток организма человека), определения чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам, а также мониторирования состояния вирусного процесса у ВИЧ-инфицированных пациентов.

Выявление бактериальных, грибковых, а также собственных клеток организма в биологических жидкостях крайне важно для диагностики многих заболеваний. В ходе одного из исследований было показано, что проточная цитометрия обладает в 100—1000 раз более высокой чувствительностью по сравнению с микроскопией и позволяет выявлять бактериальные клетки в количестве 10-100 в 1 мл крови. При более низкой концентрации бактерий в образце возможно проведение предварительной инкубации. Высокую чувствительность методу придает использование моноклональных антител, помеченных флуоресцирующим веществом.

Проточная цитометрия позволяет не только выявлять инфицирование микроорганизмами, но и определять спектр их чувствительности, причём, длительность исследования не превышает нескольких часов. Подвергнутые воздействию антибиотиков (in vivo или in vitro) микроорганизмы сравнивают с контрольными образцами того же штамма для установления их жизнеспособности, а также изменений в нуклеиновых кислотах, белках, оболочке клеток и т. п., что позволяет оценить как степень эффекта антибиотика, так и точку приложения его действия.

Ещё одной областью применения проточной цитометрии является мониторирование состояния вирусного процесса у ВИЧ-инфицированных лиц путём определения абсолютного количества CD4+ клеток и их доли в популяции лимфоцитов (отношение CD4+/CD8+). Методика может также использоваться для контроля эффективности проводимой терапии.


Ссылки

  1. Центра цитометрии Университета Пурдю (Индиана, США) http://www.cyto.purdue.edu
  2. http://www.probes.com

Литература

  1. Davey H. Flow cytometry for clinical microbiology. CLI 2004; 2/3:12-5.
  2. Shapiro H.M. "Practical Flow Cytometry", Alan Liss, .N.Y., 1985.


--Rudik D. 14:02, 22 февраля 2009 (UTC)